Kultury in vitro w biotechnologii

Na ocenę końcową modułu składają się 3 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych (30%);

- raport z zadania laboratoryjnego (20%);

- zaliczenie końcowe (50%).

Warunkiem przystąpienia do zaliczenia końcowego jest przekroczenie50% sumarycznej, maksymalnej liczby punktów z 2 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych;

- raport z zadania laboratoryjnego.

Tematy wykładów

1.Historia badań na kulturami in vitro komórek, tkanek i organów roślinnych. Charakterystyka podstawowych technik kultury in vitro roślin: kultury kalusowe, protoplastów, zawiesinowe. Wyposażenie laboratorium do kultur in vitro roślin.

2. Pożywki do kultur in vitro roślin. Wpływ składników pożywki na wzrost i różnicowanie komórek i tkanek. Totipotencja i regeneracja roślin in vitro.

3. Procesy bezpośredniej i pośredniej morfogenezy in vitro: organogeneza, embriogeneza somatyczna. Czynniki determinujące efektywność regeneracji roślin in vitro.

4. Zastosowanie kultur in vitro w genetyce i hodowli roślin: mikropropagacja roślin, transformacja genetyczna.

5. Protoplasty i mieszańce somatyczne. Zmienność somaklonalna.

6. Kultury komórek i tkanek zwierzęcych: Technika hodowli (wyposażenie, biohazard, aseptyka, pożywki wzrostowe, propagacja kultur, separacja i charakteryzacja komórek).

7. Biologia kultury komórek i tkanek zwierzęcych (charakterystyka biologiczna linii komórkowych, specyficzne typy komórek, hodowle organotypowe).

1. Podstawowe obliczenia chemiczne wykorzystywane w laboratorium kultur in vitro, przygotowanie roztworów stężonych.

2. Zakładanie kultury tkanek roślinnych: przygotowanie pożywek, sterylizacja materiału, praca w warunkach sterylnych.

3. Wpływ roślinnych regulatorów wzrostu na reakcje eksplantatów w kulturze in vitro - kultura liści tytoniu (Nicotiana tabacum).

4. Histologiczna analiza procesów różnicowania tkanek i zmian zachodzących podczas kalogenezy u roślin.

5. Organogeneza u Arabidopsis thaliana – kultura korzeni siewek

6. Mikropropagacja roślin ozdobnych – kultura liści fiołka afrykańskiego (Saintpaulia ionantha).

7. Kultury zawiesinowe komórek roślinnych - somatyczna embriogeneza u marchwi (Daucus carota).

8. Cytogenetyczna analiza zmian chromosomowych w kalusie i regenerantach. Monitorowanie zmian poziomu ploidalności w kulturach in vitro – metoda cytometrii przepływowej.

9. Analiza i podsumowanie wyników.

Na ocenę końcową modułu składają się 3 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych (30%);

- raport z zadania laboratoryjnego (20%);

- zaliczenie końcowe (50%).

Warunkiem przystąpienia do zaliczenia końcowego jest przekroczenie50% sumarycznej, maksymalnej liczby punktów z 2 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych;

- raport z zadania laboratoryjnego.

Tematy wykładów

1.Historia badań na kulturami in vitro komórek, tkanek i organów roślinnych. Charakterystyka podstawowych technik kultury in vitro roślin: kultury kalusowe, protoplastów, zawiesinowe. Wyposażenie laboratorium do kultur in vitro roślin.

2. Pożywki do kultur in vitro roślin. Wpływ składników pożywki na wzrost i różnicowanie komórek i tkanek. Totipotencja i regeneracja roślin in vitro.

3. Procesy bezpośredniej i pośredniej morfogenezy in vitro: organogeneza, embriogeneza somatyczna. Czynniki determinujące efektywność regeneracji roślin in vitro.

4. Zastosowanie kultur in vitro w genetyce i hodowli roślin: mikropropagacja roślin, transformacja genetyczna.

5. Protoplasty i mieszańce somatyczne. Zmienność somaklonalna.

6. Kultury komórek i tkanek zwierzęcych: Technika hodowli (wyposażenie, biohazard, aseptyka, pożywki wzrostowe, propagacja kultur, separacja i charakteryzacja komórek).

7. Biologia kultury komórek i tkanek zwierzęcych (charakterystyka biologiczna linii komórkowych, specyficzne typy komórek, hodowle organotypowe).

Tematy ćwiczeń:

1. Podstawowe obliczenia chemiczne wykorzystywane w laboratorium kultur in vitro, przygotowanie roztworów stężonych. Zapoznanie z aparaturą badawczą - pH-metry, wagi analityczne, pipety automatyczne, autoklaw mikrofalowy oraz pulpity laminarne.

2. Zakładanie kultury tkanek roślinnych: przygotowanie pożywek, sterylizacja materiału, praca w warunkach sterylnych.

3. Wpływ roślinnych regulatorów wzrostu na reakcje eksplantatów w kulturze in vitro - kultura liści tytoniu (Nicotiana tabacum).

4. Histologiczna analiza procesów różnicowania tkanek i zmian zachodzących podczas kalogenezy u roślin.

5. Organogeneza u Arabidopsis thaliana – kultura korzeni siewek

6. Mikropropagacja roślin ozdobnych – kultura liści fiołka afrykańskiego (Saintpaulia ionantha).

7. Kultury zawiesinowe komórek roślinnych - somatyczna embriogeneza u marchwi (Daucus carota).

8. Cytogenetyczna analiza zmian chromosomowych w kalusie i regenerantach. Monitorowanie zmian poziomu ploidalności w kulturach in vitro – metoda cytometrii przepływowej.

9. Analiza i podsumowanie wyników.

Na ocenę końcową modułu składają się 3 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych (30%);

- raport z zadania laboratoryjnego (20%);

- zaliczenie końcowe (50%).

Warunkiem przystąpienia do zaliczenia końcowego jest przekroczenie50% sumarycznej, maksymalnej liczby punktów z 2 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych;

- raport z zadania laboratoryjnego.

Tematy wykładów

1.Historia badań na kulturami in vitro komórek, tkanek i organów roślinnych. Charakterystyka podstawowych technik kultury in vitro roślin: kultury kalusowe, protoplastów, zawiesinowe. Wyposażenie laboratorium do kultur in vitro roślin.

2. Pożywki do kultur in vitro roślin. Wpływ składników pożywki na wzrost i różnicowanie komórek i tkanek. Totipotencja i regeneracja roślin in vitro.

3. Procesy bezpośredniej i pośredniej morfogenezy in vitro: organogeneza, embriogeneza somatyczna. Czynniki determinujące efektywność regeneracji roślin in vitro.

4. Zastosowanie kultur in vitro w genetyce i hodowli roślin: mikropropagacja roślin, transformacja genetyczna.

5. Protoplasty i mieszańce somatyczne. Zmienność somaklonalna.

6. Kultury komórek i tkanek zwierzęcych: Technika hodowli (wyposażenie, biohazard, aseptyka, pożywki wzrostowe, propagacja kultur, separacja i charakteryzacja komórek).

7. Biologia kultury komórek i tkanek zwierzęcych (charakterystyka biologiczna linii komórkowych, specyficzne typy komórek, hodowle organotypowe).

Tematy ćwiczeń:

1. Podstawowe obliczenia chemiczne wykorzystywane w laboratorium kultur in vitro, przygotowanie roztworów stężonych. Zapoznanie z aparaturą badawczą - pH-metry, wagi analityczne, pipety automatyczne, autoklaw mikrofalowy oraz pulpity laminarne.

2. Zakładanie kultury tkanek roślinnych: przygotowanie pożywek, sterylizacja materiału, praca w warunkach sterylnych.

3. Wpływ roślinnych regulatorów wzrostu na reakcje eksplantatów w kulturze in vitro - kultura liści tytoniu (Nicotiana tabacum).

4. Histologiczna analiza procesów różnicowania tkanek i zmian zachodzących podczas kalogenezy u roślin.

5. Organogeneza u Arabidopsis thaliana – kultura korzeni siewek

6. Mikropropagacja roślin ozdobnych – kultura liści fiołka afrykańskiego (Saintpaulia ionantha).

7. Kultury zawiesinowe komórek roślinnych - somatyczna embriogeneza u marchwi (Daucus carota).

8. Cytogenetyczna analiza zmian chromosomowych w kalusie i regenerantach. Monitorowanie zmian poziomu ploidalności w kulturach in vitro – metoda cytometrii przepływowej.

9. Analiza i podsumowanie wyników.

Na ocenę końcową modułu składają się 3 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych (30%);

- raport z zadania laboratoryjnego (20%);

- zaliczenie końcowe (50%).

Warunkiem przystąpienia do zaliczenia końcowego jest przekroczenie50% sumarycznej, maksymalnej liczby punktów z 2 aktywności studenta:

- ocena ciągła umiejętności praktycznych;

- raport z zadania laboratoryjnego.

Tematy wykładów

1.Historia badań na kulturami in vitro komórek, tkanek i organów roślinnych. Charakterystyka podstawowych technik kultury in vitro roślin: kultury kalusowe, protoplastów, zawiesinowe. Wyposażenie laboratorium do kultur in vitro roślin.

2. Pożywki do kultur in vitro roślin. Wpływ składników pożywki na wzrost i różnicowanie komórek i tkanek. Totipotencja i regeneracja roślin in vitro.

3. Procesy bezpośredniej i pośredniej morfogenezy in vitro: organogeneza, embriogeneza somatyczna. Czynniki determinujące efektywność regeneracji roślin in vitro.

4. Zastosowanie kultur in vitro w genetyce i hodowli roślin: mikropropagacja roślin, transformacja genetyczna.

5. Protoplasty i mieszańce somatyczne. Zmienność somaklonalna.

6. Kultury komórek i tkanek zwierzęcych: Technika hodowli (wyposażenie, biohazard, aseptyka, pożywki wzrostowe, propagacja kultur, separacja i charakteryzacja komórek).

7. Biologia kultury komórek i tkanek zwierzęcych (charakterystyka biologiczna linii komórkowych, specyficzne typy komórek, hodowle organotypowe).

Tematy ćwiczeń:

1. Zakładanie kultury tkanek roślinnych: przygotowanie pożywek, sterylizacja materiału, praca w warunkach sterylnych.

2. Wpływ roślinnych regulatorów wzrostu na reakcje eksplantatów w kulturze in vitro - kultura liści tytoniu (Nicotiana tabacum).

3. Odwirusowanie czosnku.

4. Organogeneza u Arabidopsis thaliana – kultura korzeni siewek.

5. Mikropropagacja roślin ozdobnych – kultura liści fiołka afrykańskiego (Saintpaulia ionantha).

6. Kultury zawiesinowe komórek roślinnych - somatyczna embriogeneza u marchwi (Daucus carota).

7. Histologiczna analiza procesów różnicowania tkanek i zmian zachodzących podczas kalogenezy u roślin.

8. Cytogenetyczna analiza zmian chromosomowych w kalusie i regenerantach. Monitorowanie zmian poziomu ploidalności w kulturach in vitro – metoda cytometrii przepływowej.

9. Analiza i podsumowanie wyników.